Guía Clínica Pediátrica De Terapia Antimicrobiana HSR

De Infecto Wiki

Referencias para todas las recomendaciones en primer antimicrobiano.

Infecciones Respiratorias Altas

Abscesos de cuello

Absceso de origen dentario (flora oral)

El tratamiento requiere de drenaje quirúrgico y remoción de tejido necrótico asociado a ATB EV hasta respuesta clínica favorable.

Primera línea

  • Penicilina sódica 200.000 U/kg/día c/6h EV, 48 horas post drenaje[1][2][3]
  • Ampicilina-sulbactam 200 mg/kg/día c/6h EV.

Alergia a B lactámicos

  • Clindamicina 30-40 mg/kg/día c/6h EV

Tratamiento oral

  • Amoxicilina Ac. Clavulánico 50 mg/k/día 12/6h VO por 7 días.

Absceso periamigdaliano (S. pyogenes, S. aureus, Anaerobios)

Siempre requiere de drenaje por aspiración o incisión o tonsilectomía asociado a antibioterapia EV hasta respuesta clínica favorable.

Primera línea

  • Penicilina sódica 200.000 U/kg/día c/6h EV, 48 hora post drenaje.[1][4][5][6]
  • Ampicilina-sulbactam 200 mg/kg/día c/6h EV.

Alergia a B lactámicos

  • Clindamicina 30-40 mg/k/día c/6h EV.

Terapia oral

  • Amoxicilina Ac. Clavulánico 50 mg/k/día c/12h VO, 10 días total.

Absceso retrofaríngeo (S. pyogenes, S. aureus, Anaerobios)

Siempre evaluación con otorrinolaringología.

Primera línea

  • Clindamicina 30-40 mg/k/día c/6h ev MÁS Ceftriaxona 50 mg/k/día x/24h ev o Cefotaxima 150 mg/k/día c/8h ev por 6 a 5 días post drenaje [1][2][4][5][7]

Terapia oral

  • Amoxicilina Ac. Clavulánico 50 mg/k/día c/6hj vo. por 21 días total.

Faringoamigdalitis

Faringoamigdalitis estreptocócica (S pyogenes)

Primera línea

  • Amoxicilina 50 mg/k/día c/12 o c/24h VO x 10 días.[8]
  • Penicilina G benzatina, en <27kg: 600.000 U, >27kg 1.200.000 U x 1 dosis IM.

Alergia a penicilina sin anafilaxia

  • Cefadroxilo 30 mg/kg/día c/12 o 24h VO x 10 días.

Anafilaxia a penicilina    

  • Azitromicina 10 mg/kg/dosis c/24h x 5 días.
  • Clindamicina 20 mg/k/día c/8h x 10 días.

Sinusitis aguda

Sinusitis Bacteriana Aguda/Adenoiditis

La gran mayoría de las sinusitis son virales, no requieren de tratamiento antibiótico. Sospechar componente bacteriano si: síntomas >10 días sin mejoría, empeoramiento clínico luego de mejoría, o inicio severo que dura más de tres días.[9][10]

Evaluar según edad y desarrollo de senos paranasales.

Bacterias habituales: S. pneumoniae, M. Catharralis, H. influenzae, S. pyogenes

Sinusitis no complicada    

  • Amoxicilina 50 mg/k/día c/12h vo. por 7-10d. [1]
Falla tratamiento    
  • Amoxicilina / Ac. clavulánico 80-90 mg/kg/día c/12h vo por 10-14d.
Mala tolerancia oral
  • Ampicilina / Sulbactam 100-200 mg/k/día c/6h ev.
  • Ceftriaxona 50 mg/kg/día c/24h ev..
En alérgicos a B lactámicos sin anafilaxia
  • Cefpodoximo 10 mg/kg/día c/12h vo. por 7-10d.
  • Anafilaxia a B-lactámicos
  • Clindamicina 30-40mg/k/día c/6-8h ev. o vo.

Infecciones óticas

Otitis Externa Aguda

Microorganismos: S. aureus, P aeruginosa

Otitis externa aguda

Otitis Externa Aguda con compromiso cutáneo

  • Ciprofloxacino ótico 1 gota c/6h ótico por 5-7 días MÁS Ciprofloxacino 20-30 mg/kg/día c/12h vo. o ev. por 7-10 días.

Severa

Primera Línea
  • Cloxacilina 150 mg/kg/día c/6h ev. MÁS Ceftazidima 150 mg/kg/día c/6h ev. 24-48 horas EV, MÁS Amikacina 15mg/kg/día c/24h ev. Luego traslape a ciprofloxacino oral para completar 10-14 días
Alternativa
  • Cloxacilina 150 mg/kg/día c/6h ev. MÁS Ciprofloxacino 20mg/Kg/día c/12h ev. 24-48 horas EV, luego traslape a ciprofloxacino oral para completar 10-14 días

Otitis Media Aguda

Microorganismos: S. pneumoniae, M. Catharralis, H. influenzae

Podrían quedar sin tratamiento antimicrobiano por 48-72hrs y control:[14]

  • Niños sanos y/o mayores de 6 meses sin diagnóstico de certeza de OMA (comienzo agudo + efusión de oído medio + inflamación oído medio)
  • > 6 meses - < 2 años con diagnóstico de OMA, compromiso unilateral sin otorrea.
  • Mayores de 2 años con diagnóstico de certeza de OMA sin infección severa (< 39ºC, otalgia leve) o sin otorrea.

OMA leve o moderada

  • Amoxicilina 50 mg/k/día c/12h vo por 10d.[14][1]

OMA Severa o Falla de tratamiento.

  • Amoxicilina/Ac Clavulánico 50 mg/kg/día c/12h vo por 10d.

Mala tolerancia oral o falla de tratamiento OMA severa

  • Ceftriaxona 50 mg/kg/día c/24h ev por 3d.

Alergia a B lactámicos sin anafilaxia

  • Cefpodoximo 10 mg/kg/día c/12h vo.

Anafilaxia a B lactámicos    

  • Cotrimoxazol 10mg/k/día c/12h vo.
  • Clindamicina 30-40 mg/k/día c/6-8h vo.

Otomastoiditis

Interconsultar a otorrinolaringología.

Tratamiento EV: mínimo 5 días.[5]

Tratamiento total: en otomastoiditis no complicada 14 días total, en complicada 21 días mínimo total.

Microorganismos: S. pneumoniae, S. pyogenes, S. aureus, P. aeruginosa > en adolescentes.

Primera línea

  • Clindamicina 40mg/kg/día c/8h ev MÁS Ceftriaxona 50mg/kg/día c/24h ev. o Cefotaxima 150mg/kg/día c/8h ev. 14-21 días total. [5][1][2][15]

Infecciones Respiratorias Bajas

Coqueluche

Microorganismo: Bordetella pertussis

Primera línea

  • Azitromicina 10mg/kg/día c/24h vo. por 5d.[1]
  • Claritromicina 15mg/kg/día c/12h vo. por 7d. [16]

Alternativa

  • Cotrimoxazol 8 mg/kg/día (en base a trimetropin) c/12h vo por 14 días.

Neumonía y complicaciones

Neumonía adquirida en la comunidad

La gran mayoría son virales y no requieren de antibióticos. Favor revisar mayores detalles en Manejo antimicrobiano pediátrico hospitalario con neumonía bacteriana comunitaria

Se debe verificar el esquema de vacunación del menor. Si calendario de vacunación incompleto para Hib se debe considerar su cobertura ATB.

Microorganismos: S. pneumoniae, M. Catharralis, H. influenzae

Primera línea

  • Amoxicilina 50mg/kg/día c/12h vo. por 7d.[17][1]

Mala tolerancia oral o NAC Grave.

  • Penicilina 100.000 U/Kg/día c/6h ev.
  • Ampicilina 150 – 200 mg/Kg/día ev.

Alérgico a B-lactámicos sin anafilaxia

  • Cefuroximo 30 mg/kg/día c/12h vo.
  • Cefpodoximo 10 mg/kg/día c/12h vo.
  • Ceftriaxona 50 mg/kg/día c/24h ev.

Anafilaxia a B-lactámicos

  • Clindamicina 40 mg/kg/día mg/kg/día c/6-8h. vo. o ev.
  • Vancomicina 40-60 mg/kg/día c/6-8h. ev.
  • Levofloxacino 16-20 mg/kg/día c/12h vo. o ev.

Neumonía atípica

Microorganismo: Mycoplasma pneumoniae

Esquemas Antibióticos

  • Azitromicina 10 mg/k/día c/24h vo. por 5d.[17][1][2]
  • Claritromicina 15mg/kg/día c/12h vo. por 10-14d.

Neumonía aspirativa

Microorganismos: Anaerobios: Fusobacterium, Peptostreptococcus, Streptococcus spp. Staphylococcus aureus, gram negativos.

Primera Línea

  • Penicilina Sódica 200.000 U/Kg/día c/6h. ev. por 24-48 hrs. o hasta respuesta clínica.[1][2]

Alérgicos

  • Clindamicina 40 mg/kg/día c/8h ev.

Traslape oral

  • Amoxicilina/ ácido clavulánico 50mg/kg/día c/12h vo. para completar 10 días.
  • Clindamicina 30-40 mg/kg/día c/6-87h vo. para completar 10 días.

Neumonía adquirida en la comunidad con derrame pleural

Derrame Pequeño (< ¼ tórax o < 10 mm)

Tratamiento ATB de NAC primera linea, no es necesario drenar ni tomar cultivos de líquido. 7 días total

Derrame Moderado (>¼ tórax o > 10 mm) o severo (> ½ tórax)

Tratamiento ATB EV, toma de cultivos y evaluar drenaje.

  • Ceftriaxona 50mg/kg/día c/24h ev.[17][1][2] Hasta resolución de fiebre o a lo menos 7 días.

Traslape oral.

  • Amoxicilina 50mg/kg/día c/12h vo. En caso de empiema completar a lo menos 21 días.

Neumonia asociada a ventilación mecánica

Realizar notificación IAAS

Tomar cultivo cuantitativo de aspirado endotraqueal o por labado broncoalveoral para objetivar microorganismo y orientar terapia.

Primera línea

  • Ceftriaxona 50 mg/kg/día c/24h ev por 24-48h o hasta la mejoría clínica.[18][5][19][1][2]

Infecciones Locales de Piel y Partes Blandas

Impétigo

Microorganismos: S aureus, S pyogenes

Lesiones leves y localizadas

  • Mupirocina 2-3 veces al día tópica en la lesión x 5 d.[20][1]

Lesiones moderadas

  • Flucloxacilina 50-75 mg/k/día c/8h vo. x 10d.
  • Cloxacilina 150 mg/k/día c/6h vo. x 10d.
  • Cefadroxilo 30-50 mg/k/día c/12h vo x 10d.
Alérgicos a β lactámicos
  • Clindamicina 30 mg/k/día c/8h vo. x10d
S. aureus meticilino resistente de la comunidad
  • Cotrimoxazol 8-10mg/k/día (en base a trimetropin) c/12h vo. x 10d.
  • Clindamicina 30 mg/k/día c/8h vo x 10d.

Impetigo buloso 

Microorganismos: S. aureus, S. pyogenes

Primera Línea

  • Flucloxacilina 50-75 mg/k/día c/8h vo. x 10d.[20][1]
  • Cloxacilina 150 mg/k/día c/6h vo. x 10d.
  • Cefadroxilo 30-50 mg/k/día c/12h vo x 10d.
Alérgicos a β lactámicos
  • Clindamicina 30 mg/k/día c/8h vo. x10d
S. aureus meticilino resistente de la comunidad
  • Cotrimoxazol 8-10mg/k/día (en base a trimetropin) c/12h vo. x 10d.
  • Clindamicina 30 mg/k/día c/8h vo x 10d.

Erisipela y Celulitis

Erisipela/Celulitis con puerta de entrada

Primera línea

  • Cloxacilina 150 mg/k/día c/6h ev.[20][1]

Paso a oral con

  • Flucloxacilina 50-75 mg/k/día c/8h vo. x 10d.
  • Cloxacilina 150 mg/k/día c/6h vo. x 10d.
  • Cefadroxilo 30-50 mg/k/día c/12h vo x 10d.
Alérgicos a β lactámicos
  • Clindamicina 30 mg/k/día c/8h vo. x10d

De pie

  • Cloxacilina 150 mg/k/día c/6h ev.
  • Amikacina 15mg/k/día c/24h ev.

Paso a oral con

  • Ciprofloxacino 30mg/kg/día c/12h vo x 10d.

Infecciones profundas de la piel y tejidos blandos

Fasceítis Necrotizante

Emergencia Quirrúrgica!

No hay ensayos clínicos, la terapia debe ser mantenida hasta:

  • No requerir desbridamiento
  • Clínica estable.
  • Afebril > 48-72 horas.

Completar mínimo 14 días

Primera Línea

  • Penicilina Sódica 100.000 UI/k/día c/6h EV MÁS Clindamicina 40mg/kg/día c/6-8h EV. Hasta detención de la progresión, resolución del shock y estabilización del paciente.[20][1]

Piomiositis

Microorganismos: S. aureus.

Requiere drenaje quirpurgico.

Primera línea

  • Cloxacilina 150mg/kg/día c/6h ev por 2-5 días.[20][2][5]

Paso a oral

  • Flucloxacilina 75 mg/k/día c/8h vo. x 2-3 semanas.
  • Cloxacilina 150 mg/k/día c/6h vo. x 2-3 semanas.

Foliculitis/Forúnculo

Primera línea

  • Flucloxacilina 50-75 mg/k/día c/8h vo. x 7-10d.[21]
  • Cloxacilina 150 mg/k/día c/6h vo. x 7-10d.
  • Cefadroxilo 30-50 mg/k/día c/12h vo x 7-10d.

Absceso perirectal

Microorganismos: S. aureus, P. Aeruginosa, bacilos gram negativos y anaerobios

Drenaje quirúrgico es fundamental

Completar 5 días ev, 10 días total.

Primera línea

  • Clindamicina 30-40 mg/kg/día c 6-8h ev MÁS Ceftazidima 150 mg/kg/día c/8h ev. o Ciprofloxacino 20mg/kg/día c/12h ev.

Paso a oral

  • Amoxicilina Ac. Clavulánico 50mg/kg/día c/12h vo.

Ectima Gangrenoso

Microorganismoas: P. aeruginosa, Enterobacterias, S. aureus, Streptococcus

Duración de tratamiento según evolución clínica y eventual desbridamiento quirúrgico

Primera línea

  • Ceftazidima 150 mg/kg/día c/8h ev. MÁS Amikacina 15mg/k/día c/24h ev. [22]

Alérgicos a B-lactámicos

  • Ciprofloxacino 30-40 mg/Kg/día c/12h ev. MÁS Amikacina 15mg/k/día c/24h ev.

Infecciones de Piel por Virus Varicela Zóster

Varicela

Ver Protocolo Varicela en Pediatría

Herpes Zóster

Inmunocompetente ≥ 12 años

  • ≤ 40 kg: Aciclovir 80 mg/k/día vo c/6h por 7 días.[22]
  • ≥ 40 kg: Aciclovir 800mg c/8h vo por 7 días.

Inmunocomprometidos y hospitalizados

  • ≤ 2 años: Aciclovir 30 mg/k/día c/8h ev. por 7-10 días.
  • ≥ 2 años: Aciclovir 1500/m2/día ev. por 7-10 días.

Infecciones Mediadas por Toxinas

Escarlatina

Escarlatina Médica

Primera línea

  • Amoxicilina 50 mg/kg/día, c/24h o c/12h vo. por 10 días [8]
  • Cefadroxilo 30 mg/kg/día c/12h vo. por 10 días.

Escarlatina Quirúrgica

Primera línea

  • Penicilina 100.000 UI/kg/día c/6h ev. MÁS Cloxaciliona 100-150 mg/kg/día c/6h ev. por 10 días.

Shock Tóxico

  • Cambiar cloxacilina por clindamicina 30-40 mg/kg/día c/6h ev.

Piel escaldada

Síndrome de piel escaldada

Microorganismos: S aureus toxina exfoliativa

Primera línea

  • Cloxacilina 150 mg/k/día c/6h EV por 7 días. [1] [23]

Shock tóxico estreptocócico

Primera línea

  • Penicilina sódicoa 200.000 - 250.000 UI/kg/día c/6h ev MÁS clindamicina 40mg/kg/día c/6-8h ev. Mínimo 14 días si se asocia a bacteriemia. [20]
  • IGIV 1 gr/k/día día 1, luego 0.5 gr/k/día día 2 y 3.x/24h ev. por 3 días. [24]

Infecciones Osteoarticulares

Diagnóstico

Aspiración aguja fina o Drenaje quirúrgico:[25]

  • Control del foco
  • Diagnostico microbiológico
  • Preservar la función de la articulación.

Tratamiento antibiótico

Esquemas espíricos. [1] [26] [25] [5]

Artritis Séptica y Osteomielitis

Microorganismos: S. aureus, K. Kingae, S. pyogenes, S. pneumoniae

RN - 2 meses

  • Cloxacilina 150 mg/k/día c/6h vo. MÁS ampicilina 100-200 mg/kg/día c/6h MÁS cefotaxima 100-150 mg/kg/día c/8h o amikacina 15mg/kg/día c/24h.

Por 4 semanas. En < 1 mes tratamiento completo EV.

Edad > 2 meses < 5 años

  • Cloxacilina 150 mg/k/día c/6h EV. MÁS ceftriaxona 50mg/kg/día c/24h EV.
  • Cefazolina 100 mg/k/dosis c/8h EV.

Oral:

  • Cefadroxilo 50mg/kg/día c/12 VO
  • Amoxicilina / Ac Clavulánico 50mg/kg/día c/12h VO.

Edad > 5 años

  • Cloxacilina 150 mg/k/día c/6h EV.

Oral:

  • Cloxacilina 150mg/kg/día c/6h VO.
  • Cefadroxilo 50mg/kg/día c/12 VO.

Duración del tratamiento

Artritis séptica no complicada: EV:4 días. Total: 3 semanas. (Cadera 4 sem)

Osteomielitis no complicada: EV: 4 días Total: 4 semanas.

Artritos séptica u osteomielitis complicada generalmente se requiere mayor duración de tratamiento EV.

Osteomielitis de pie

Microorganismos: S. aureus, Pseudomona aeruginosa

Primera línea

  • Cloxacilina 150 mg/k/día c/6h EV. MÁS ceftazidima 150 mg/kg/día c/8h ev. MÁS amikacina 15mg/k/día c/24h ev.
  • Cloxacilina 150 mg/k/día c/6h EV MÁS ciprofloxacino 30mg/kg/día c/12h.

Oral:

  • Ciprofloxacino 30mg/kg/día c/12h VO.

Duración de tratamiento igual a ostemielitis.

Cambio a terapia oral

PCR <40 mg/l (que baje > 50% del valor inicial), afebril más de 48 horas y mejoría clínica.

Mordeduras

Lavado o desbridamiento quirúrgico

  • Lavar herida con abundante agua y jabón o solución salina fisiológica (NaCl 9%) estéril.
  • Desbridamiento quirúrgico en caso de necrosis.
  • Jofré L et al. Rev Chil Infect 2006; 23 (1): 20-34.

Microorganismos:

Animales: Polimicrobiana (aerobios y anaerobios), aerobios más frecuentes aislados Pasteurella multocida y Staphylococcus aureus.

Humanos: Polimicrobiana. S. viridans, S. epidermidis, Corynebacterium sp, S. aureus, Eikenella corrodens, Bacteroides fragilis, Peptostreptococcus.

Profilaxis antibiótica

La profilaxis está indicada en presencia de: heridas profundas, injuria severa o cualquier herida > 8 horas, localizadas en mano, cara, genitales y en aquellas que requieren cirugía.

Indicar profilaxis siempre en mordedura humana, de gato o animal salvaje.

Primera línea

  • Amoxicilina / ácido clavulánico 50 mg/kg/día c/12h VO x 5 días. (en caso de tratamiento x 7-14 días). [27] [2][28]
  • Ampicilina/Sulbactam 100-200 mg/kg/día en base a ampicilina c/6h EV. Paso a vía oral según evolución.

Alérgicos

  • Clindamicina 30-40mg/k/día c/6-8h VO.
  • Cotrimoxazol (Pasteurella) 10mg/k/día en base a trimetropin c/12h VO.
  • Doxiciclina (>8 años) <45 kg: 4.4 mg/kg primer día y luego 2.2 mg/kg/día. >45 kg: 100 mg VO.

Vacunación

Antitetánica: Evaluar según tipo de herida y antecedentes de esquema de vacunación del paciente. En este caso siempre considerar herida sucia.[29]

Vacunación Antirrábica

La vacunación post exposición está indicada en:[29]

  • Personas expuestas o que exista alta sospecha de exposición al virus rábico.
  • Persona mordida, rasguñada o lamida en piel lesionada y/o mucosa por un animal sospechoso o diagnosticado rabioso.
  • Persona mordida por un animal vagabundo que desaparezca o muera posterior a la mordedura.
  • Persona mordida por un animal mamífero silvestre.
  • Persona mordida o que haya estado en contacto con murciélagos (manipulación a manos desnudas voluntaria o involuntariamente, entrado a lugares cerrados donde viven colonias sin usar protección respiratoria, o presencia de murciélagos en habitación)

La mordedura del murciélago no siempre es perceptible (sobre todo mientras la persona duerme), por lo tanto las personas no refieren haber sido mordidas, sin embargo, muchos casos que reportan esta situación terminan desarrollando la enfermedad.

Heridas por armas de fuego.

Las presentes sugerencias son para heridas por armas de fuego de bajo calibre, por armas cortas en contexto urbano. No incluyen armas largas, de alto calibre, de guerra, o situaciones de combate. [30][31][32][33][34][35][36][37]

Cabeza

Con fragmentos de bala remanentes

Sin compromiso de senos paranasales: Cefazolina 150 mg/kg/día cada 8 hrs EV por 48-72 hrs

Con compromiso de senos paranasales: Ampicilina/Sulbactam 150 mg/kg/día EV por 48-72 hrs

Sin fragmentos de bala remanentes y sin compromiso de senos paranasales

No requiere profilaxis

Cuello

No requiere profilaxis

Tórax

Sin drenaje pleural: Cefazolina 25-50mg/kg/día, c/6-8hrs EV por 24h.

Con drenaje pleural: Penicilina 100.000ui/kg/día, c/6hrs EV hasta retiro del drenaje.

Abdomen

Ceftriaxona 50mg/kg/dosis + Metronidazol 10mg/kg/dosis EV

Piperacilina tazobactam 300mg/kg/día c/8hrs EV

Duración

Sin perforación de víscera hueca: 1 dosis

Con perforación: 24 horas.

Fracturas

Herida limpia

Si paciente cuenta con acceso fácil a atención de salud, con compromiso de re-control en 24-48hrs, se podría realizar solo cuidados locales de la herida.

Penicilina 100.000ui/kg/día c/6hrs EV por 24h.

Herida sucia o en mano, pie o tobillo

Penicilina 100.000ui/kg/día c/6hrs + cloxacilina 150mg/kg/día c/8hrs por 72 horas.

Fijadores externos

Según protocolo del hospital

Partes blandas

No requiere profilaxis.

Columna

Sin compromiso de víscera hueca

Ceftriaxona 100 mg/kg/día EV + Vancomicina 60 mg/kg/día cada 6 hrs EV por 72 hrs.

Con compromiso de víscera hueca

Ceftriaxona 100 mg/kg/día EV + Vancomicina 60 mg/kg/día cada 6 hrs EV + Metronidazol 30 mg/kg/día cada 8 hrs EV por 5-7 días.

Trauma balístico de 2 o más órganos

Ceftriaxona 50mg/kg/día c/24hrs + Metronidazol 30mg/kg/día c/6hrs EV por 5-7 días

Piperacilina tazobactam 300mg/kg/día c/8hrs EV por 5-7 días.

Infecciones Urinarias

Revisar Guía clínica manejo de Infección de Tracto Urinario (ITU) de manejo ambulatorio.

ITU baja

  • Cefadroxilo 30 mg/kg/día c/12h VO. x 5 días.
  • Nitrofurantoína (en mayores de 3 meses) 5-7 mg/kg/día c/6h VO. x 5 días.

ITU alta

  • Cefadroxilo 30-50 mg/kg/día c/12h VO. x 7 días.
  • Amikacina c/24h EV x 7 días
  • Ceftriaxona 50mg/kg/día c/24h x 7 días.

En < de 1 mes: duración según agente aislado, al menos 5 días EV, en caso de Urosepsis se completará 7 días EV y 10 días totales.

En > 1 mes con urosepsis 5 días EV y completar 10 días total.

Infecciones Oculares

Dacriocistitis

Dacriocistitis y dacrioadenitis aguda

Primera línea

  • Flucloxacilina 75 mg/k/día VO x 7-10 días.

Alérgicos

  • Cefadroxilo 30 mg/kg/día c/12h VO. x 5 días.

Celulitis periorbitaria y orbitaria

Celulitis periorbitaria (preseptal) con puerta de entrada

Microorganismos: S. aureus, S. pyogenes

Primera línea

  • Cloxacilina 150 mg/kg/día c/6h EV x 7-10 días. Tratamiento EV hasta 24 horas afebril, luego paso oral con Cloxacilina o Flucloxacilina o Cefadroxilo. [1][2][38]

Celulitis periorbitaria (preseptal) sin puerta de entrada

Microorganismos: S. pneumoniae. H. influenzae (si no está vacunado).

Primera línea

  • Cefotaxima 150 mg/kg/día c/8h EV.

Completar 10 días en total, luego pasar a oral con Amoxicilina / Ac. Clavulánico 50 mg/kg/día c/12h vo.

Alergicos

  • Clindamicina 30-40 mg/kg/día c/6-8h EV.
  • Cotrimoxazol 10 10mg/kg/día c/12h EV.

Celulitis periorbitaria (preseptal) asociada a sinusitis

Microorganismos: S. pneumoniae, H influenzae no tipificable, M. catarrhalis.

Primera línea

  • Cefotaxima 150 mg/kg/día c/8h EV.

Si en buenas condiciones pasar vía oral con Amoxicilina / Ác. Clavulánico o cefuroximo o cefpodoximo. Completar 14 a 21 días en total ( EV + oral).

Celulitis orbitaria (postseptal)

Microorganismos: S. aureus, S. pyogenes, anaerobios.

Primera línea

  • Ceftriaxona 50 mg/kg/día c/24h EV. MÁS Clindamicina 30-40 mg/kg/día c/ 6-8h. [1][2][38]

Completar 10 a 14 días luego de desbridamiento quirúrgico (si requiere), con un total mínimo de 21 días. Siempre EV.

Infecciones Gastrointestinales

Diarrea y fiebres entéricas.

La diarrea aguda acuosa (< 7 días) en general es viral, no requiere tratamiento ni toma de exámenes microbiológicos.

En caso de diarrea disentérica se recomienda solicitar coprocultivo y dar tratamiento según agente aislado. [39][40][1]

Campylobacter jejuni

Siempre tratar

  • Azitromicina 10mg/kg/día c/24h VO. x 3 días.

Vibrio Cholerae

Siempre tratar

  • Azitromicina 10mg/kg/día c/24h VO. x 3 días.

Shiguella spp.

Iniciar tratamiento idealmente una vez descartado cuadro de SHU y producción de shigatoxina.

  • Ciprofloxacino 30 mg/k/día c/12h VO x 3-5 días.
  • Ceftriaxona 50 mg/kg/día c/24h EV x 3-5 días.
  • Azitromicina 10 mg/kgdía c/24h VO por 3 días.

Salmonella spp (no typhi)

Solo tratar en casos de mayor riesgo de bacteriemia:

  1. < 3 meses
  2. Inmunodeficiencia
  3. Asplenia anatómica o funcional.
  4. Corticoesteroides o terapia inmunosupresora.
  5. EII, Achloridria.
  • Azitromicina 10 mg/kgdía c/24h VO por 3 días en cuadros leves.
  • Ceftriaxona 50 mg/kg/día c/24h EV x 3-5 días.
  • Ciprofloxacino 30 mg/k/día c/12h VO x 5-7 días.

Yersinia enterocolítica

No tratar de rutina, solo si bacteriemia o infección extraintestinal.

  • Ciprofloxacino 30-40 mg/k/día c/12h VO/EV.
  • Cotrimoxazol 8 mg/kg/día c/12h EV.

Considerar al menos 5 días. Evaluar días totales según clínica

Si séptico

  • Ceftriaxona 50 mg/kg/día c/24h EV. Tratar al menos 3 a 4 semanas.

Clostridium difficile

Tratar diarrea moderada a severa

  • Vancomicina 125mg c/6h VO por 10-14 días

Diarrea del viajero

Microorganismos: Echerichia coli (enterotoxigénica más frecuente) Campylobacter, Salmonella, Shigella.

  • Azitromicina 10mg/kg/día c/24h VO. x 3 días.[40][1]
  • Ciprofloxacino 30 mg/k/día c/12h VO x 5-7 días.

Diarrea por parásitos

Microorganismos: Giardia lamblia

  • Metronidazol 30-40 mg/kg/día c/8h VO x 7-10 días.[40][1]
  • Albendazol 10-15 mg/kg/día c/8h VO x 7 a 10 días.

Fiebre Tifoidea

La duración de tratamiento dependerá de la respuesta clínica del paciente.

Puede ser tratamiento oral desde el inicio.

Tratamiento más prolongado en caso de enfermedad invasiva focal (Ejm osteomielitis).

Micoorganismos: Salmonella typhi (GRUPO D), Salmonella paratyphi (GRUPO A y B).

Primera línea

  • Ceftriaxona 50 mg/kg/día c/24h. EV x 14 días o más, al menos 7 días afebril. [1][2]
  • Ciprofloxacino 20-30 mg/kg/día c/12h EV x 14 días o más, al menos 7 días afebril.

Infecciones Intrabdominales

Apendicitis y peritonitis

Microorganismos: Enterobacterias y anaerobios.

Estadío 1

Apendicitis no perforada: Apéndice inflamado, indurado, sin perforación macroscópica.

  • Cefazolina 30 mg/kg/dosis previo a cirugía EV por una vez. [41][1]

Estadío 2

Apendicitis perforada sin peritonitis o peritonitis localizada: Signos de contaminación, necrosis, perforación macroscópica, pus localizado.

  • Amikacina 15 mg/kg/día c/24h EV o gentamicina 5-7 mg/kg/día c/24h EV MÁS Metronidazol 30 mg/kg/día c/8h EV.

Estadío 3

Peritonitis difusa. Apéndice perforado, con presencia de pus difuso en abdomen.

  • Amikacina 1 5mg/kg/día c/24h EV o gentamicina 5-7 mg/kg/día c/24h EV MÁS Metronidazol 30 mg/kg/día c/8h EV x 24-48 horas EV mínimo. Completar 5 días totales con amoxicilina / ácido clavulánico 50 mg/kg/día c/12h VO..

Segunda línea

  • Piperacilina / tazobactam 300 mg/kg/día c/6h EV

Alérgicos

  • Ciprofloxacino 20 mg/kg/día c/12h EV MÁS Metronidazol 30 mg/kg/día c/8h EV

Peritonitis secundaria a peritoneodiálisis

Microorganismos: Gram positivos y enterobacterias.

Primera linea

Tratamiento intraperitoneal.Administradas en la bolsa de dianeal al 1,5 %, con permanencia mínima de 6 horas. [42][43][1][44]

Cefazolina en dosis de peritoneodiálisis (PD) MÁS Ceftazidima o Amikacina en dosis de PD c/24h. Duración según agente aislado.

En caso de meticilino resistencia reemplazar Cefazolina por Vancomicina c/3-7 días (según niveles)

Dosis de peritoneodiálisis

Antibiótico | Terapia Continua, Dosis de Carga | Terapia Continua, Dosis mantención | Terapia intermitente (cicladora)

Amikacina | 25mg/L |  12mg/L |  2mg/kg

Cefazolina  |  500mg/L  |  125mg/L  |  20mg/kg

Ceftazidima  |  500mg/L  |  125mg/L  |  20mg/kg

Vancomicina  |  1000mg/L  |  25mg/L  |  Dosis carga: 30 mg /kg, repetir cada 3-5 días dosis de 15mg/kg

Infecciones Linfáticas y de Glándulas Salivales

Linfadenitis cervical aguda

Microrganismos: S aureus, S pyogenes, anaerobios.

< 3 meses

Siempre tomar hemocultivo en menores de 3 meses a pesar de estar afebril, por sospecha de síndrome adenitis-celulitis causado por Streptoccocus agalactiae. En caso de ser positivo realizar punción lumbar. [45]

Microorganismos: Streptococcus agalactiae

  • Ampicilina 150 mg/kg/día c/6h EV MÁS Cloxacilina 150 mg/kg/día c/6h EV MÁS Gentamicina 5-7 mg/kg/día c/24h EV. [46][47][1]

14 días de ampicilina – cloxacilina. Gentamicina máximo 7 días, solo si se confirma Streptococcus grupo B.

>3 meses < 3 años

S. aureus lo más frecuente.

  • Flucloxacilina 50-75 mg/kg/día c/8h VO x 10 días.
  • Cloxacilina 150mg/kg/día c/6h VO/EV x 10 días
  • Cefadroxilo 50mgkg/día c/12h VO x 10 días.

>3años

Microorganismos: S. aureus y S. pyogenes, anaerobios

  • Penicilina sódica 100.000 UI/kg/día c/6h EV x 10 días.
  • Cloxacilina 150mg/kg/día c/6h EV x 10 días
  • Amoxicilina / ácido clavulánico 50 mg/kg/día c/12h VO x 10 días.

Parotiditis

Parotiditis Aguda Bacteriana

Parotiditis generalmente etiología viral. Pensar en causa bacteriana si:

  • Comienzo brusco de aumento de volumen eritematoso en zona parotídea.
  • Signos sistémicos, fiebre elevada asociada a calofríos.
  • Salida de pus por conducto de Stenon.

Microorganismos: S. aureus, S. pyogenes, polimicrobianas

Primera línea

  • Amoxicilina / Ac clavlánico 50mg/kg/día c/12h VO x 7 días [48]
  • Flocloxacilina 50-75 mg/kg/día c/8h VO x 7 días
  • Cefadroxilo 50 mg/kg/día c/12h VO x 7 días

Arañazo de Gato

Enfermedad por arañazo de gato

Sin compromiso hepatoesplénico

  • Azitromicina 10 mg/kg/día c/24h VO x 7 días

Con compromiso hepatoesplénico

  • Azitromicina 10 mg/kg/día c/24h VO x 7 días MÁS Ciprofloxacino 20-30 mg/kg/día c/12h VO x 14 días.

Infecciones Encefálicas

Meningitis

Meningitis Bacteriana Aguda

Ajustar duración y tratamiento según microorganismo aislado.

< 6 semanas

Microorganismos: SGB, Listeria, E. Coli, S. pneumoniae, Enterococcus spp., otros gram negativos.

Si se aisla Listeria y SGB siempre asociar gentamicina y suspender Cefotaxima.

  • Ampicilina 300-400 mg/kg/día c/6-8h EV MÁS Cefotaxima 200-300 mg/kg/día c/6-8h EV o Gentamicina (si sospecha de SGB) 5-7.5 mg/kg/día c/24h EV. [6][2][49][1]

Para < 1 mes ajustar dosis según edad gestacional y días de vida.

>6 semanas

Microorganismos: Streptococcus pneumoniae, Neisseria meningitidis, HiB, Listeria monocitogenes, SGB, E.Coli.

  • Ceftriaxona 100 mg/kg/día c/24h EV.

Duración de tratamiento según agente:

Neisseria meningitidis: 7 días.

Haemophilus influenzae: 10 a 14 días.

Streptococcus pneumoniae: 10 a 14 días.

Streptococcus grupo B: 21 días.

Gram negativos: 21 días desde esterilización de LCR (tomar PL de control)

Listeria monocytogenes: 21 días

Encefalitis

Encefalitis herpética

RN a 4 meses

Mínimo 21 días, control de LCR cercano a día 21. Si positivo prolongar por 7 días más.

En menores de un mes si PCR negativa iniciar terapia supresora con Aciclovir oral 900mg/m2/día cada 8 horas por 6 meses.

4 meses a 12 años

  • Aciclovir 30-45 mg/kg/día c/8h EV. x 21 días.

>12 años

  • Aciclovir 30 mg/kg/día c/8h EV. x 21 días.

Infecciones Cardíacas

Endocarditis infecciosa

Adquirida en la comunidad o con valvula protésica tardía.

Valvula portésica tardía > 1 año post instalación.

Microorganismos: Staphylococcus aureus (30%), Streptococcus viridans (18%) S. gallolyticus (ex bovis) (7%), Enterococcus spp. (10%), grupo AACEK (2%), gram negativos (2%), hongos (2%), Cultivo negativo (8%).

  • Ampicilina sulbactam 200-300 mg/kg/día c/4-6h EV MÁS Gentamicina 3-6 mg/kg/día c/8h EV MÁS Vancomicina (si válvula protésica) 60mg/kg/día c/6h EV x 4-6 semanas dependiendo de microorganismo aislado, desde hemocultivo negativo. [50][1][2][6]

Adquirida en la comunidad con cánula vascular o con válvula protésica precoz

  • Vancomicina 60mg/kg/día c/6h EV MÁS Gentamicina 3-6 mg/kg/día c/8h EV MÁS Rifampicina (si material protésico) 20 mg/kg/día c/12h VO.

Profilaxis endocarditis

Utilizar solo en procedimientos dentales con manipulación o perforación de la mucosa oral, procedimientos con incisión o biopsia de mucosa respiratoria. En pacientes con alguno de los siguientes factores de riegso:

  • Válvulas protésicas.
  • EBSA previa.
  • Trasplantados cardiacos con valvulopatía.
  • Las sighuientes cardiopatías congénitas:
    • Cianóticas no reparadas
    • Shunts y conductos paliativos
    • Defectos residuales alrededor de parches
    • Primeros 6 meses luego de reparación completa

Terapia oral

Imposibilidad de terapia oral    

  • Ampicilina 50 mg/k/día (máximo 2 gr.) EV o IM
  • Cefazolina o Ceftriaxona 50 mg/kg (mpaximo 1gr) EV o IM

Alérgicos

  • Clindamicina 20 mg/kg (máximo 600mg) VO, EV o IM.
  • Azitromicina o claritromicina 15 mg/kg (máximo 500 mg) VO.
  • Cefazolina o Ceftriaxona 50 mg/kg (mpaximo 1gr) EV o IM.

Infecciones del Torrente Sangíneo

Meningococcemia

  • Ceftriaxona 100 mg/k/día c/12h EV x 7 días. [1][2][6]

Infecciones en Recién Nacidos

En este caso considerar a aquellos neonatos que se fueron de alta de puerperio o neonatología, y por lo tanto, estuvieron en su casa por lo menos 48 hrs.

Onfalitis

Microrganismos: Bacilos gram negativos (Escherichia coli, Klebsiella pneumoniae, y Proteus mirabilis) S aureus, S pyogenes.

Si presentación séptica tomar hemocultivo y cultivo LCR.

Primera línea

  • Cloxacilina 150 mf/kg/día c/6-8h EV MÁS Amikacina 15mg/kg/día c/24h EV x 7-10 días.[52][1]

Si cuadro invasor sospechar S pyogenes y anaerobios y modificar esquema a Penicilina + clindamicina + amikacina y consultar a infectología.

Conjuntivitis neonatal

  • Microrganismos: Chlamydia trachomatis, N. gonorrhoeae, S. aureus, Herpes simplex

La duración del tratamiento dependerá del agente aislado.

Primera línea

  • Ceftriaxona 50 mg/kg/día c/24h EV x 1 día MÁS Azitromicina 20mg/kg/día c/24h VO x 3 días MÁS Cloxacilina 150 mg/kg/día c/6h EV x 7 días. [6][53][52][1]

RN febril sin foco

Microrganismos: S agalactiae, E coli, Listeria, S pneumoniae, Enterococcus, otros gram negativos.

Primera línea

Con PL normal. Si PL alterada manejar como meningitis.

  • Ampicilina 150 mg/kg/día c/6h EV MÁS Amikacina 15mg/kg/día c/24h EV. Duración según agente identificado. [1]

Infecciones en Pacientes Oncológicos

Según protocolo PINDA

Dosis Máximas de Antimicrobianos

Ver Dosis Máximas de Antimicrobianos

Referencias

Por motivos de formato referencias de todos los antimicrobianos utilizados se encuentran en el primero mencionado. Se irán actualizado a medida que se actualice la guía.

  1. 1,00 1,01 1,02 1,03 1,04 1,05 1,06 1,07 1,08 1,09 1,10 1,11 1,12 1,13 1,14 1,15 1,16 1,17 1,18 1,19 1,20 1,21 1,22 1,23 1,24 1,25 1,26 1,27 1,28 1,29 1,30 1,31 1,32 1,33 1,34 1,35 1,36 1,37 1,38 Bradley JS, Nelson JD, Cantey M Joseph B., et al. 2016 Nelson’s Pediatric Antimicrobial Therapy. American Academy of Pediatrics; 2016. Link texto completo biblioteca UC. Link 1. https://doi.org/10.1542/9781581109863
  2. 2,00 2,01 2,02 2,03 2,04 2,05 2,06 2,07 2,08 2,09 2,10 2,11 2,12 2,13 2,14 2,15 2,16 2,17 2,18 2,19 Carpenter CF, Gilpin N. Appendicitis. In: Bartlett JG, Auwaerter PG, Dzintars K, Avidic E, Smith JM, Hsu AJ, editors. The Johns Hopkins POC-IT ABX Guide [Internet] Baltimore, MD: Johns Hopkins Press, Unbound Medicine. Revisado en 2017. Disponible en https://www.hopkinsguides.com/hopkins/index/Johns_Hopkins_ABX_Guide/.
  3. Dar-Odeh, N. S., Abu-Hammad, O. A., Al-Omiri, M. K., Khraisat, A. S., & Shehabi, A. A. (2010). Antibiotic prescribing practices by dentists: a review. Therapeutics and clinical risk management, 6, 301–306. https://doi.org/10.2147/tcrm.s9736
  4. 4,0 4,1 Bochner, R. E., Gangar, M., & Belamarich, P. F. (2017). A Clinical Approach to Tonsillitis, Tonsillar Hypertrophy, and Peritonsillar and Retropharyngeal Abscesses. Pediatrics in review, 38(2), 81–92. https://doi.org/10.1542/pir.2016-0072
  5. 5,0 5,1 5,2 5,3 5,4 5,5 5,6 McMullan BJ, Andresen D, Blyth CC, Avent ML, Bowen AC, Britton PN, Clark JE, Cooper CM, Curtis N, Goeman E, Hazelton B, Haeusler GM, Khatami A, Newcombe JP, Osowicki J, Palasanthiran P, Starr M, Lai T, Nourse C, Francis JR, Isaacs D, Bryant PA; ANZPID-ASAP group. Antibiotic duration and timing of the switch from intravenous to oral route for bacterial infections in children: systematic review and guidelines. Lancet Infect Dis. 2016 Aug;16(8):e139-52. doi: 10.1016/S1473-3099(16)30024-X. Epub 2016 Jun 16. PMID: 27321363.
  6. 6,0 6,1 6,2 6,3 6,4 6,5 David N., M.D. Gilbert, Eliopoulos, George M., M.D., Henry F., M.D. Chambers, Michael S., M.D. Saag, and Pavia, Andrew T., M.D., The Sanford Guide to Antimicrobial Therapy 2017, [1]
  7. Cheng, J., & Elden, L. (2013). Children with deep space neck infections: our experience with 178 children. Otolaryngology--head and neck surgery : official journal of American Academy of Otolaryngology-Head and Neck Surgery, 148(6), 1037–1042. https://doi.org/10.1177/0194599813482292
  8. 8,0 8,1 Shulman, S. T., Bisno, A. L., Clegg, H. W., Gerber, M. A., Kaplan, E. L., Lee, G., Martin, J. M., & Van Beneden, C. (2012). Clinical practice guideline for the diagnosis and management of group A streptococcal pharyngitis: 2012 update by the Infectious Diseases Society of America. Clinical infectious diseases : an official publication of the Infectious Diseases Society of America, 55(10), 1279–1282. https://doi.org/10.1093/cid/cis847
  9. Wald, E. R., Applegate, K. E., Bordley, C., Darrow, D. H., Glode, M. P., Marcy, S. M., ... & Weinberg, S. T. (2013). Clinical practice guideline for the diagnosis and management of acute bacterial sinusitis in children aged 1 to 18 years. Pediatrics, 132(1), e262-e280.https://doi.org/10.1542/peds.2013-1071
  10. Chow AW, Benninger MS, Brook I, Brozek JL, Goldstein EJ, Hicks LA, Pankey GA, Seleznick M, Volturo G, Wald ER, File TM Jr; Infectious Diseases Society of America. IDSA clinical practice guideline for acute bacterial rhinosinusitis in children and adults. Clin Infect Dis. 2012 Apr;54(8):e72-e112. doi: 10.1093/cid/cir1043. Epub 2012 Mar 20. PMID: 22438350.
  11. Kaushik V, Malik T, Saeed SR. Interventions for acute otitis externa. Cochrane Database Syst Rev. 2010 Jan 20;(1):CD004740. doi: 10.1002/14651858.CD004740.pub2. PMID: 20091565.
  12. Rosenfeld RM, Schwartz SR, Cannon CR, Roland PS, Simon GR, Kumar KA, Huang WW, Haskell HW, Robertson PJ. Clinical practice guideline: acute otitis externa. Otolaryngol Head Neck Surg. 2014 Feb;150(1 Suppl):S1-S24. doi: 10.1177/0194599813517083. Erratum in: Otolaryngol Head Neck Surg. 2014 Mar;150(3):504. Erratum in: Otolaryngol Head Neck Surg. 2014 Mar;150(3):504. PMID: 24491310.
  13. Manso MC, Rodeia SC, Rodrigues S, Cavilhas P, Domingos R. Malignant Otitis Externa and Stroke. Eur J Case Rep Intern Med. 2016 Apr 14;3(4):000387. doi: 10.12890/2016_000387. PMID: 30755871; PMCID: PMC6346865.
  14. 14,0 14,1 Lieberthal AS, Carroll AE, Chonmaitree T, Ganiats TG, Hoberman A, Jackson MA, Joffe MD, Miller DT, Rosenfeld RM, Sevilla XD, Schwartz RH, Thomas PA, Tunkel DE. The diagnosis and management of acute otitis media. Pediatrics. 2013 Mar;131(3):e964-99. doi: 10.1542/peds.2012-3488. Epub 2013 Feb 25. Erratum in: Pediatrics. 2014 Feb;133(2):346. Dosage error in article text. PMID: 23439909.
  15. Kordeluk S, Kraus M, Leibovitz E. Challenges in the management of acute mastoiditis in children. Curr Infect Dis Rep. 2015 May;17(5):479. doi: 10.1007/s11908-015-0479-4. PMID: 25903167.
  16. Circular B51 nº6 – Vigilancia epidemiológica de Coqueluche (Tos Ferina). Ministerio de Salud, Chile. Link 1. Link 2
  17. 17,0 17,1 17,2 Bradley JS, Byington CL, Shah SS, et al. The management of community-acquired pneumonia in infants and children older than 3 months of age: clinical practice guidelines by the Pediatric Infectious Diseases Society and the Infectious Diseases Society of America. Clin Infect Dis. 2011;53(7):e25-e76. https://doi.org/10.1093/cid/cir531
  18. Kalil AC, Metersky ML, Klompas M, et al. Management of Adults With Hospital-acquired and Ventilator-associated Pneumonia: 2016 Clinical Practice Guidelines by the Infectious Diseases Society of America and the American Thoracic Society [published correction appears in Clin Infect Dis. 2017 May 1;64(9):1298] [published correction appears in Clin Infect Dis. 2017 Oct 15;65(8):1435] [published correction appears in Clin Infect Dis. 2017 Nov 29;65(12):2161]. Clin Infect Dis. 2016;63(5):e61-e111. doi:10.1093/cid/ciw353
  19. Foglia E, Meier MD, Elward A. Ventilator-associated pneumonia in neonatal and pediatric intensive care unit patients. Clin Microbiol Rev. 2007;20(3):409-425. doi:10.1128/CMR.00041-06
  20. 20,0 20,1 20,2 20,3 20,4 20,5 Stevens DL, Bisno AL, Chambers HF, Dellinger EP, Goldstein EJ, Gorbach SL, Hirschmann JV, Kaplan SL, Montoya JG, Wade JC. Practice guidelines for the diagnosis and management of skin and soft tissue infections: 2014 update by the infectious diseases society of America. Clin Infect Dis. 2014 Jul 15;59(2):147-59. doi: 10.1093/cid/ciu296. Epub 2014 Jun 18. PMID: 24947530.
  21. Laureano AC, Schwartz RA, Cohen PJ. Facial bacterial infections: folliculitis. Clin Dermatol. 2014 Nov-Dec;32(6):711-4. doi: 10.1016/j.clindermatol.2014.02.009. Epub 2014 Mar 1. PMID: 25441463.
  22. 22,0 22,1 22,2 Red Book: 2021–2024 Report of the Committee on Infectious Diseases By: Committee on Infectious Diseases, American Academy of Pediatrics, David W. Kimberlin, MD, FAAP, Elizabeth D. Barnett, MD, FAAP, Ruth Lynfield, MD, FAAP, Mark H. Sawyer, MD, FAAP https://doi.org/10.1542/9781610025782
  23. Berk, D. R., & Bayliss, S. J. (2010). MRSA, staphylococcal scalded skin syndrome, and other cutaneous bacterial emergencies. Pediatric annals, 39(10), 627–633. https://doi.org/10.3928/00904481-20100922-02
  24. Darenberg, J., Ihendyane, N., Sjölin, J., Aufwerber, E., Haidl, S., Follin, P., Andersson, J., Norrby-Teglund, A., & StreptIg Study Group (2003). Intravenous immunoglobulin G therapy in streptococcal toxic shock syndrome: a European randomized, double-blind, placebo-controlled trial. Clinical infectious diseases : an official publication of the Infectious Diseases Society of America, 37(3), 333–340. https://doi.org/10.1086/376630
  25. 25,0 25,1 Arnold, J. C., & Bradley, J. S. (2015). Osteoarticular Infections in Children. Infectious disease clinics of North America, 29(3), 557–574. https://doi.org/10.1016/j.idc.2015.05.012
  26. Pääkkönen, M., Kallio, P. E., Kallio, M. J., & Peltola, H. (2015). Does Bacteremia Associated With Bone and Joint Infections Necessitate Prolonged Parenteral Antimicrobial Therapy?. Journal of the Pediatric Infectious Diseases Society, 4(2), 174–177. https://doi.org/10.1093/jpids/piv009
  27. Jofré M., Leonor, Perret P., Cecilia, Abarca V., Katia, Solari G., Verónica, Olivares C., Roberto, & López Del P., Javier. (2006). Recomendaciones para el manejo de mordeduras ocasionadas por animales. Revista chilena de infectología, 23(1), 20-34. https://dx.doi.org/10.4067/S0716-10182006000100002
  28. Spille, J., Schulz, J., Spille, D. C., Naujokat, H., Wieker, H., Wiltfang, J., & Gülses, A. (2021). Microbiological Characteristics and Surgical Management of Animal-Bite-Related Oral & Maxillofacial Injuries: A Single Center's Experience. Antibiotics (Basel, Switzerland), 10(8), 998. https://doi.org/10.3390/antibiotics10080998
  29. 29,0 29,1 Ministerio de Salud de Chile. Norma Técnica Nº 169 sobre vacunación antirrábica en humanos. 2014.[2]
  30. Lichte, P., Oberbeck, R., Binnebösel, M., Wildenauer, R., Pape, H. C., & Kobbe, P. (2010). A civilian perspective on ballistic trauma and gunshot injuries. Scandinavian journal of trauma, resuscitation and emergency medicine, 18, 35. https://doi.org/10.1186/1757-7241-18-35
  31. Bastos, R., Baisden, C. E., Harker, L., & Calhoon, J. H. (2008). Penetrating thoracic trauma. Seminars in thoracic and cardiovascular surgery, 20(1), 19–25. https://doi.org/10.1053/j.semtcvs.2008.01.003
  32. Ayoub, F., Quirke, M., & Frith, D. (2019). Use of prophylactic antibiotic in preventing complications for blunt and penetrating chest trauma requiring chest drain insertion: a systematic review and meta-analysis. Trauma surgery & acute care open, 4(1), e000246. https://doi.org/10.1136/tsaco-2018-000246
  33. Goldberg, S. R., Anand, R. J., Como, J. J., Dechert, T., Dente, C., Luchette, F. A., Ivatury, R. R., Duane, T. M., & Eastern Association for the Surgery of Trauma (2012). Prophylactic antibiotic use in penetrating abdominal trauma: an Eastern Association for the Surgery of Trauma practice management guideline. The journal of trauma and acute care surgery, 73(5 Suppl 4), S321–S325. https://doi.org/10.1097/TA.0b013e3182701902
  34. Kirton, O. C., O'Neill, P. A., Kestner, M., & Tortella, B. J. (2000). Perioperative antibiotic use in high-risk penetrating hollow viscus injury: a prospective randomized, double-blind, placebo-control trial of 24 hours versus 5 days. The Journal of trauma, 49(5), 822–832. https://doi.org/10.1097/00005373-200011000-00006
  35. Delgado, G., Jr, Barletta, J. F., Kanji, S., Tyburski, J. G., Wilson, R. F., & Devlin, J. W. (2002). Characteristics of prophylactic antibiotic strategies after penetrating abdominal trauma at a level I urban trauma center: a comparison with the East guidelines. The Journal of trauma, 53(4), 673–678. https://doi.org/10.1097/00005373-200210000-00009
  36. Fullen, W. D., Hunt, J., & Altemeier, W. A. (1972). Prophylactic antibiotics in penetrating wounds of the abdomen. The Journal of trauma, 12(4), 282–289. https://doi.org/10.1097/00005373-197204000-00003
  37. Papasoulis, E., Patzakis, M. J., & Zalavras, C. G. (2013). Antibiotics in the treatment of low-velocity gunshot-induced fractures: a systematic literature review. Clinical orthopaedics and related research, 471(12), 3937–3944. https://doi.org/10.1007/s11999-013-2884-z
  38. 38,0 38,1 38,2 38,3 38,4 Hauser, A., & Fogarasi, S. (2010). Periorbital and orbital cellulitis. Pediatrics in review, 31(6), 242–249. https://doi.org/10.1542/pir.31-6-242
  39. Pfeiffer, M. L., DuPont, H. L., & Ochoa, T. J. (2012). The patient presenting with acute dysentery--a systematic review. The Journal of infection, 64(4), 374–386. https://doi.org/10.1016/j.jinf.2012.01.006
  40. 40,0 40,1 40,2 Guarino, A., Ashkenazi, S., Gendrel, D., Lo Vecchio, A., Shamir, R., Szajewska, H., European Society for Pediatric Gastroenterology, Hepatology, and Nutrition, & European Society for Pediatric Infectious Diseases (2014). European Society for Pediatric Gastroenterology, Hepatology, and Nutrition/European Society for Pediatric Infectious Diseases evidence-based guidelines for the management of acute gastroenteritis in children in Europe: update 2014. Journal of pediatric gastroenterology and nutrition, 59(1), 132–152. https://doi.org/10.1097/MPG.0000000000000375
  41. Solomkin, J. S., Mazuski, J. E., Bradley, J. S., Rodvold, K. A., Goldstein, E. J., Baron, E. J., O'Neill, P. J., Chow, A. W., Dellinger, E. P., Eachempati, S. R., Gorbach, S., Hilfiker, M., May, A. K., Nathens, A. B., Sawyer, R. G., & Bartlett, J. G. (2010). Diagnosis and management of complicated intra-abdominal infection in adults and children: guidelines by the Surgical Infection Society and the Infectious Diseases Society of America. Clinical infectious diseases : an official publication of the Infectious Diseases Society of America, 50(2), 133–164. https://doi.org/10.1086/649554
  42. Warady, B. A., Bakkaloglu, S., Newland, J., Cantwell, M., Verrina, E., Neu, A., Chadha, V., Yap, H. K., & Schaefer, F. (2012). Consensus guidelines for the prevention and treatment of catheter-related infections and peritonitis in pediatric patients receiving peritoneal dialysis: 2012 update. Peritoneal dialysis international : journal of the International Society for Peritoneal Dialysis, 32 Suppl 2(Suppl 2), S32–S86. https://doi.org/10.3747/pdi.2011.00091
  43. Barrera, P., Zambrano, P., Contreras, A., Dreves, P., Salgado, I., Vogel, A., Encalada, R., Cano, F.G., Río, S.D., & Henríquez, H. (2008). Complicaciones infecciosas en diálisis peritoneal crónica Rama Nefrología Pediátrica - Sociedad Chilena de Pediatría. [3]
  44. Li, P. K., Chow, K. M., Cho, Y., Fan, S., Figueiredo, A. E., Harris, T., Kanjanabuch, T., Kim, Y. L., Madero, M., Malyszko, J., Mehrotra, R., Okpechi, I. G., Perl, J., Piraino, B., Runnegar, N., Teitelbaum, I., Wong, J. K., Yu, X., & Johnson, D. W. (2022). ISPD peritonitis guideline recommendations: 2022 update on prevention and treatment. Peritoneal dialysis international : journal of the International Society for Peritoneal Dialysis, 42(2), 110–153. https://doi.org/10.1177/08968608221080586
  45. Bustos B, Raúl. (2004). Síndrome adenitis-celulitis: Una presentación infrecuente de infección tardía por streptococcus agalactiae. Revista chilena de pediatría, 75(5), 455-458. https://dx.doi.org/10.4067/S0370-41062004000500007
  46. Brook I. (2007). Microbiology and principles of antimicrobial therapy for head and neck infections. Infectious disease clinics of North America, 21(2), 355–vi. https://doi.org/10.1016/j.idc.2007.03.014
  47. Leung, A. K., & Davies, H. D. (2009). Cervical lymphadenitis: etiology, diagnosis, and management. Current infectious disease reports, 11(3), 183–189. https://doi.org/10.1007/s11908-009-0028-0
  48. Al-Dajani, N., & Wootton, S. H. (2007). Cervical lymphadenitis, suppurative parotitis, thyroiditis, and infected cysts. Infectious disease clinics of North America, 21(2), 523–viii. https://doi.org/10.1016/j.idc.2007.03.004
  49. Tunkel, A. R., Hartman, B. J., Kaplan, S. L., Kaufman, B. A., Roos, K. L., Scheld, W. M., & Whitley, R. J. (2004). Practice guidelines for the management of bacterial meningitis. Clinical infectious diseases : an official publication of the Infectious Diseases Society of America, 39(9), 1267–1284. https://doi.org/10.1086/425368
  50. 50,0 50,1 Baddour, L. M., Wilson, W. R., Bayer, A. S., Fowler, V. G., Jr, Tleyjeh, I. M., Rybak, M. J., Barsic, B., Lockhart, P. B., Gewitz, M. H., Levison, M. E., Bolger, A. F., Steckelberg, J. M., Baltimore, R. S., Fink, A. M., O'Gara, P., Taubert, K. A., & American Heart Association Committee on Rheumatic Fever, Endocarditis, and Kawasaki Disease of the Council on Cardiovascular Disease in the Young, Council on Clinical Cardiology, Council on Cardiovascular Surgery and Anesthesia, and Stroke Council (2015). Infective Endocarditis in Adults: Diagnosis, Antimicrobial Therapy, and Management of Complications: A Scientific Statement for Healthcare Professionals From the American Heart Association. Circulation, 132(15), 1435–1486. https://doi.org/10.1161/CIR.0000000000000296
  51. Wilson, W., Taubert, K. A., Gewitz, M., Lockhart, P. B., Baddour, L. M., Levison, M., Bolger, A., Cabell, C. H., Takahashi, M., Baltimore, R. S., Newburger, J. W., Strom, B. L., Tani, L. Y., Gerber, M., Bonow, R. O., Pallasch, T., Shulman, S. T., Rowley, A. H., Burns, J. C., Ferrieri, P., … Quality of Care and Outcomes Research Interdisciplinary Working Group (2007). Prevention of infective endocarditis: guidelines from the American Heart Association: a guideline from the American Heart Association Rheumatic Fever, Endocarditis, and Kawasaki Disease Committee, Council on Cardiovascular Disease in the Young, and the Council on Clinical Cardiology, Council on Cardiovascular Surgery and Anesthesia, and the Quality of Care and Outcomes Research Interdisciplinary Working Group. Circulation, 116(15), 1736–1754. https://doi.org/10.1161/CIRCULATIONAHA.106.183095
  52. 52,0 52,1 Remington, J. S. (2011). Infectious diseases of the fetus and newborn infant. Saunders/Elsevier. https://doi.org/10.1016/c2009-0-50442-4
  53. Bennett, J. E., Dolin, R., & Blaser, M. J. (2020). Mandell, Douglas, and Bennett’s principles and practice of infectious diseases e-book (Ninth edition.). Elsevier Inc. https://doi.org/10.1016/C2012-1-00075-6 Biblioteca UC